Mycoplasma SPP

10 razones para el uso de ACITT 100® y ACITT AQUA® como el antibiótico de elección para el control del Mycoplasma SPP. y otros agentes infecciosos de importancia en granjas avícolas.

  1. ACITT® es eficaz contra un espectro de agentes infecciosos que afectan el tracto respiratorio de las aves (Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma synoviae, Avibacterium paragallinarum, Pasteurella multocida, Streptococcus pneumoniae; Cerdá et al., 2001; Stipkovits y Mockett, 2007; Behbahan et al., 2008). El género Mycoplasma tiene más de 100 especies, sin embargo, las mencionadas son las que principalmente afectan la especie (Nascimento et al., 2005; OIE, 2018). Es importante mencionar que la dosis dependerá de la especie de Mycoplasma a tratar, más por particularidad fisiopatogénicas que por razones inherentes al product.
  2. ACITT® es una excelente alternativa contra agentes con tropismo por el sistema digestivo como Clostridium perfringens (síndrome de cama mojada húmeda y colangiohepatitis) y Ornithobacterium rhinotracheale (ORT) en pollos y pollitas de reemplazo. El efecto que se logra a nivel de fagolisosoma en el macrófago tras el ingreso del ACITT® a nivel intracitoplasmático permitirá la eliminación de bacterias de interés en otros sistemas orgánicos, como el digestivo (Kanoh y Rubin, 2010; Steel et al., 2012; Moges et al., 2018). Además, tras la inhibición del efecto inmunomodulador del gallisepticum también evitamos la proliferación de otros agentes infecciosos, soportando la inmunocompetencia en el ave.
  3. El efecto post-antibiótico del ACITT® va más allá de su efecto bactericida. La concentración bactericida necesaria contra Mycoplasma es muy similar a la concentración bacteriostática (Kreizinger et al., 2017). Por lo anterior, se obtiene un efecto “auto-potenciado” del principio activo del producto, ya que, ante una primera dosis, las bacterias susceptibles a ACITT® serán destruidas. Otras cuantas bacterias —bajo el efecto bacteriostático del antibiótico, sobrevivirán sin perpetuarse, permitiendo al sistema inmune del animal desarrollar sus propios mecanismos de defensa para destruir los microorganismos invasores. La protección a largo plazo que se obtendría tras la estimulación de la inmunidad activa, permitirá al ave enfrentar desafíos posteriores en el tiempo.
  4. ACITT® logra una alta concentración terapéutica en plasma en menos de 2 horas post-ingesta y su biodisponibilidad es 3 veces mayor que la de tilosina (Okamoto et al., 1981). ACITT® es el antimicoplásmico que presenta la menor concentración inhibitoria mínima, lo cual corresponde a la concentración más baja de un antimicrobiano necesario para inhibir el crecimiento de un microorganismo después de su incubación. Esta característica reduce la oportunidad de resistencia microbiana de los agentes específicos, de gran importancia actualmente en salud pública.
  5. ACITT® logra una alta concentración en las células epiteliales de la tráquea, logrando niveles terapéuticos en no más de 7 minutos post-ingesta (Stuart et al., 2007).
  6. ACITT® logra una alta concentración en las células epiteliales del intestino, logrando niveles terapéuticos en el espacio intracelular del enterocito en no más de 10 minutos post-ingesta (Stuart et al., 2007). Esto tiene gran importancia para el tratamiento de la infección por perfringens y ORT.
  7. ACITT® penetra en los macrófagos (células efectoras del sistema inmune innato), logrando concentraciones más elevadas que otros macrólidos (Mtairag et al., 1995; Sunazuka et al., 2003). Los niveles logrados de ACITT® dentro del macrófago modifican el pH del endosoma, afectando de manera indirecta las vías de elusión del sistema inmune por parte de varios de los agentes víricos de importancia en los sistemas de producción avícola. En conclusión, ACITT® potencia las capacidades antivíricas a darse dentro del macrófago de manera natural.
  8. El metabolito principal de ACITT®, la 3- acetiltilosina (3-AT), es una molécula con propiedades antimicrobianas efectivas a nivel intestinal (Stuart et al., 2007).
  9. ACITT® posee excelentes propiedades físicas para la incorporación en pre-mezclas y agua de bebida, además su concentración permite la fácil inclusión en la pre-mezcla o agua de bebida. Presenta un alto grado de fluidez, resultando en un bajo riesgo de contaminación cruzada y un alto grado de homogeneidad en el alimento, dado el tamaño de la partícula.
  10. Las características granulométricas de ACITT® garantizan el consumo del producto por parte de las aves, sin posibilidades de rechazo por causas inherentes al mismo. Esto garantiza la correcta medicación de individuo a individuo.

Autor: Nathalia María del Pilar Correa Valencia, MV, MSc, Dsc(c)

#biotecno #acitt100 #acittaqua #avicultura

Referencias:

Behbahan NGG, Asasi K, Afsharifar AR, Pourbakhsh SA. Susceptibilities of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviea isolates to antimicrobial agents in vitro. Int J Poult Sci 2008; 7(11):1058-1064.

Cerdá RO, Giacoboni GI, Xavier JA, Sansalone PL, Landoni F. In vitro sensitivity of various strains of Mycoplasma synoviae against five antibiotics. Facultad de Ciencias Veterinarias, UNLP, Buenos Aires Argentina. 2001.

Kanoh S, Rubin BK. Mechanisms of action and clinical application of macrolides as immunomodulatory medications. Clin Microbiol Rev 2010; 23:590-615.

Kreizinger Z, Grózner D, Sulyok KM, Nilsson K, Hrivnák V, Benčina D, Gyuranecz M. Antibiotic susceptibility profiles of Mycoplasma synoviae strains originating from Central and Eastern Europe. BMC Vet Res 2017; 13(1):342.

Moges R, De Lamache DD, Sajedy S, Renaux BS, Hollenberg MD, Muench G, Abbott EM, Buret AG. Anti-inflammatory benefits of antibiotics: Tylvalosin induces apoptosis of porcine neutrophils and macrophages, promotes efferocytosis, and inhibits pro-inflammatory CXCL-8, IL1α, and LTB4 production, while inducing the release of pro-resolving Lipoxin A4 and Resolvin D1. Front Vet Sci 2018; 5:57.

Mtairag EM, Abdelghaffar H, Douhet C, Labro MT. Role of extracellular calcium in in vitro uptake and intraphagocytic location of macrolides. Antimicrob Agents Chemother 1995; 39(8):1676-1682.

Nascimento EV, Nascimento PM, Barreto M. Avian mycoplasmosis update. Rev Bras Cienc Avıc 2005; 7:1-9.

OIE. Enfermedades, infecciones e infestaciones de la Lista de la OIE en vigor en 2018. Consultado: 13.09.18. URL: http://www.oie.int/es/sanidad-animal-en-el-mundo/enfermedades-de-la-lista-de-la-oie-2018/ 

Okamoto R, Tsuchiya M, Nomura H, Iguchi H, Kiyoshima K, Hori S, Inui T, Sawa T, Takeuchi T, Umezawa HBiological properties of new acyl derivatives of tylosin. J Antibiot 1981; 33:1309-1315.

Steel HC, Theron AJ, Cockeran R, Anderson R, Feldman C. Pathogen- and host-directed anti-inflammatory activities of macrolide antibiotics. Mediators Inflamm 2012; 2012:584262.

Stipkovits L, Mockett APA. Aivlosin granules for oral solution used for the treatment and prevention of mycoplasmosis due to Mycoplasma gallisepticum. Abstracts of the 15th Congress of the World Veterinary Poultry Association, Beijing, China, p. 537. 2007.

Stuart AD, Brown TDK, Imrie G, Tasker JB, Mockett APA. Intra-cellular accumulation and trans-epithelial transport of aivlosin, tylosin and tilmicosin. Pig J 2007; 60;2635.

Sunazuka T, Yoshida K, Oohori M, Haragaya Y, Iwai Y, Akagawa KS, Omura S. Effects of 15-membered macrolide compounds on monocyte to macrophage differentiation. J Antibiot 2003; 56:721-724.